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结构特异性 Z-DNA 蛋白水解靶向嵌合体使作用于 RNA 1 的腺苷脱氨酶靶向降解

分享的是一篇发表在JACS上的文章,标题是“Structurally Specifc ZDNA Proteolysis Targeting Chimera Enables Targeted Degradation of Adenosine Deaminase Acting on RNA 1”。本文的作者是来自哈佛医学院的Wenyi Wei和西奈山治疗中心发现西奈山伊坎医学院的Jian Jin.

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基于 DNA 和 RNA 的 PROTAC 的普遍进步,仍然需要探索和扩展更具体的工具,从而扩大基于 DNA 的 PROTAC 的范围。与传统的 A 型或 B 型 DNA 不同,Z 型 DNA 是一种仅在特定条件下和特定靶序列下表现出来的构型,可以被特定的读取蛋白(如 ADAR1 或 ZBP1)识别,以发挥下游生物学功能。

ADAR1(作用于RNA1的腺苷脱氨酶)是一种复杂参与RNA编辑过程的关键酶,特别是在双链RNA分子腺苷转化为肌苷的过程中。其影响涵盖一系列疾病,尤其是其在癌症中的过度表达及其与自身免疫性疾病的复杂相互作用(图1A)。鉴于ADAR的多方面结构域结构,所报道的抑制剂仅靶向催化编辑依赖性结构域,而细胞环境中的其他编辑独立功能未受影响,这影响了其潜在的治疗能力。因此,出现了一种更具说服力的策略,即靶向ADAR1进行降解,考虑到ADAR1对Z-DNA的独特和固有的亲和力,其特征是其糖-磷酸盐的Zig-Zag构象骨架(图1B),在PROTAC设计中引入Z-DNA作为基础元素是最佳和可行的选择。

Z-PROTAC可以通过将针对ADAR1癌蛋白精心定制的Z-DNA结合部分与E3连接酶配体连接来设计。在相互作用时,PROTAC协调ADAR1与E3泛素连接酶的紧密接近,触发ADAR1泛素化过程,并随后被26S蛋白酶体降解。作者在本文中设计了一种基于Z-DNA的蛋白质水解靶向嵌合体(Z-PROTAC)(图1C)。合成了一种Z型寡脱氧核苷酸(Z-DNA),其作为复杂募集ADAR1的配体,与VHL配体偶联,用于选择性募集VHL E3连接酶。这种策略性设计劫持了泛素化过程,最终导致ADAR1的精确降解。Z-PROTAC的构建是通过无铜菌株促进的叠氮化物-炔烃环加成(SPAAC)反应获得的。

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图1. Z-PROTAC劫持VHL E3连接酶靶向降解细胞中的ADAR1


使用电泳迁移率位移测定 (EMSA)确认通过 Z-22 抗体结合的Z-DNA 形成, Z-DNA在特定条件下出现,包括特定(GC)n重复序列、增加的超螺旋以及转录、复制和染色质重塑过程中的蛋白质结合,环境的pH和离子等因素进一步促进Z型DNA的形成。作者设计了一种具有(CG)6序列的合成DNA构建体,表示为FAMDNA 2,并在DNA 2的5′末端战略性地引入和合成了一个5,6FAM荧光标签用于追踪。随后,使用各种离子,如NaCl和CoCl3,来诱导Z-DNA的形成(图2A)。在不同的离子条件下培养这些构建体以产生Z型DNA(图2A),然后进行电泳迁移率偏移测定(EMSA)实验(图2B)。诱导的FAM-Z-DNA 2表现出对Z-22抗体的亲和力,而非转化的FAM-B-DNA 2没有这种相互作用,这是由EMSA测定有效捕获的辨别。如图2C所示,将初始量的0.5μM FAM-TRF DNA、FAM随机DNA和FAM-DNA 2引入补充有/不补充3M NaCl的EMSA缓冲液中,促使Z-DNA形成。随后,将上述含有DNA的预混缓冲液与未稀释的Z22抗体(1μg)混合,并在室温下再孵育30分钟。然后将所得混合物进行4%聚丙烯酰胺凝胶电泳以实现结合的(FAM-Z-DNA)和未结合的FAM-DNA 2(FAM-B-DNA 2)的分离。结果表明,3M NaCl可以诱导Z-DNA而对照DNA(TRF或随机DNA)没有类似的反应。随后的研究涉及与Z22抗体和FAM-Z-DNA 2浓度升高相结合的离子条件的系统探索(图2D,E)。此外,使用圆二色性(CD)测定法来确认NaCl或CoCl3诱导的Z-DNA构象的形成。总之,研究结果证实了Z-DNA在剂量依赖性中表现出与Z22抗体结合的倾向,并证明了通过暴露于3M NaCl,可对Z-DNA 2有效诱导。

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图2. 离子诱导FAM-Z-DNA的形成和电泳迁移率偏移分析(EMSA)检测FAM-Z-DNA和Z22抗体之间的结合。



Z-DNA作为ADAR1配体的设计ADAR1在细胞环境中表现出与Z-DNA的特异性结合。然而,目前尚不清楚诱导的Z-DNA,特别是在缓冲条件下合成的Z-DNA是否对ADAR1具有功能性结合亲和力。为了阐明Z-DNA在促进ADAR1相互作用中的关键作用,设计了两种生物素修饰的配体,生物素-(CG)3和生物素-(CG)6。生物素TRF ODN采用B型构象,以其与端粒中的TRF1TRF2的特异性结合而闻名(图3A),用作阴性对照为了探测ADAR1和生物素化寡核苷酸(ODNs)之间的相互作用,ODN作为诱饵分子进行链亲和素生物素下拉实验(图3B−E)。图3C显示生物素DNA 110 μg)在没有离子的条件下,以及在涉及0.15 M NaCl3 M NaCl的条件下无法下调Myc-ADAR1蛋白。这一观察结果可能归因于DNA构建体的长度不足,无法有效捕获110150 kDa的蛋白质(图3C)。然而,当在3M NaCl条件下诱导Z-DNA形成时,生物素-Z-DNA 2成功地证明了ADAR1下拉能力(图3DE)。由于选择性剪接,Myc-ADAR1 p110p150衍生物都可以被检测到。正如ADAR1Myc免疫印迹所证实的那样,代表BDNATRF在这些实验条件下未能引发ADAR1下拉。生物素-Z-DNA 2在没有离子的情况下与ADAR1表现出相对较弱的结合,与由3 M NaCl诱导时观察到的显著结合相反(图3DE)。这种差异可能是在涉及3 M NaCl的条件下Z-DNA转化效率提高的结果,再加上ADAR1Z22Z-DNA表现出的独特性。因此,在随后的研究中,大量使用3 M NaCl作为产生Z-DNA以靶向ADAR1的优选条件。
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图3. ADAR1蛋白与生物素-Z-DNA结合


Z-PROTAC诱导的ADAR1在HeLa细胞中降解。为了评估Z-PROTAC对ADAR1蛋白的降解潜力,使用HeLa细胞系作为代表性的细胞模型。合成了17个PROTAC,统称为Z-PROTA 1c−17c(图4A,4B)。之后通过脂质体介导的转染以5 μg/mL的浓度进入HeLa细胞,并收集细胞裂解物用于蛋白质印迹分析。

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图4. Z-PROTAC针对ADAR1进行降解


如图4C所示,ADAR蛋白以各种异构体存在;因此,也需要在该实验条件下检测含有AI脱氨酶的ADAR1ADAR2ADAR3以及另一种具有结构域的Z-DNA结合蛋白ZBP1。鉴于结构域对Z-DNA结合的重要性,以及不同ADAR1亚型的存在(图4C),作者对Z-PROTAC进行了特异性分析,以确定其降解不同亚型的能力。图4D显示Z-PROTACs 7c8c9c仅诱导ADAR1 p110p150亚型的降解,与其他亚型和ZBP1蛋白相比,对这些ADAR1蛋白变体表现出明显的特异性。此外,表达GFPHeLa细胞用5 μg/mL载体、Z-DNA 2ODN)和9c转染后,后者相对于对照组显示出明显的抗癌效果(图4E)。随后,作者进行了全面的ADAR1 p110降解的时间和剂量动力学研究,揭示了对9c的明显时间和剂量依赖性反应(图4F)。重要的是,使用VH0322.5 μM)、MG1322.5 μM)和ODNZDNA5 μg/mL)作为竞争剂与9c一起进行的拯救实验表明,9c诱导的降解可能以VHL和蛋白体依赖的方式进行(图4G)。
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图5. Z-PROTAC对ADAR1的降解可有效诱导肿瘤细胞的细胞死亡。


Z-PROTAC通过诱导ADAR1降解发挥抗癌活性,结果显示化合物8c9c(图5A中的结构)在HeLa细胞中对ADAR1的特异性降解(图4D)。所以接下来作者扩展到各种癌症细胞系,包括MDA-MB-436MDAMB-468MCF7(图5B)并进行了一系列测定,包括细胞生长曲线、CCK-8测定和菌落形成测定,如图5C−F所示。在用5 μg/mL Z-DNA ODN9c转染不同细胞系后,结果显示,与已报道的ADAR1抑制剂8-AzaZ-DNA ODN相比,9c对癌症细胞具有强大的抑制作用,如图5C所示。值得注意的是,虽然正常细胞(MRC5LF1)表现出一定程度的抑制作用,但这种作用相对弱于在癌症细胞中观察到的作用(图S13)。在CCK-8测定中,9c显示出与8-Aza相当的细胞毒性(图5D)。随后,作者进行了集落形成测定,以深入了解Z-PROTAC对癌症细胞的影响(图5E)。如图5F所示,集落数量的定量评估表明,Z-PROTAC 9c显著抑制了各种癌症细胞系的集落形成潜力。相反,8-AzaZ-DNA ODN在这方面表现出相对较低的效率(图5F)。这些结果共同表明,与抑制剂相比,Z-PROTAC表现出增强的效力。
Z-PROTAC对癌症细胞凋亡和坏死信号的调节作用。首先,由于ADAR1在癌症环境中也被称为癌蛋白,在癌症和正常细胞中使用蛋白质印迹分析来评估靶蛋白(ADAR1 p110p150ZBP1作为对照)的表达水平。图6A显示了过度表达与正常细胞相比,在各种癌症细胞系中的ADAR1蛋白异构体。除了蛋白质印迹外,还在各种细胞系中检测ADAR1ZBP1mRNA水平(图6B)。鉴于ADAR1与凋亡和坏死途径有关,在癌症和正常细胞系中进行了实验测定,以验证Z-PROTAC是否诱导下游途径改变。治疗后用5 μg/mL载体、ODN8c9c对各种癌症和正常细胞进行24小时的Western印迹分析以评估凋亡标记蛋白。图6C描述了在癌症细胞系中,Z-PROTAC 8c9c治疗后,总胱天蛋白酶3显著降低,裂解PARP1显著增加,在正常细胞中观察到裂解PARP1略有增加。坏死标记物蛋白质,如p-MLKL,在用8c9c处理后,在癌症细胞A375中表现出显著增加,而这种作用在正常细胞(如MRC5)中基本上不存在(图6D)。为此,肿瘤细胞中ADAR1的过度表达可能赋予肿瘤细胞对ADAR1癌蛋白的癌基因成瘾特征,从而使其对Z-PROTAC诱导的更敏感ADAR1降解以触发下游MLKL通路。基于这些观察结果,作者假设Z-PROTAC激活癌症细胞的凋亡和坏死途径,而仅轻微触发正常细胞的凋亡。非癌正常细胞中的凋亡也解释了Z-PROTAC诱导细胞死亡的原因(图6CS14S15)。因此,如图6E所示,作者得出结论,Z-PROTAC诱导的重写癌症细胞的信号传导途径可能涉及凋亡和坏死途径。
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图6. 与非癌正常细胞相比,ODN(Z-DNA)、8c和9c对癌症细胞中细胞信号传导的功能影响的分析。


总之,本文工作将 Z 型 DNA 与 ADAR1结合,其降解是通过利用与 Z 型 DNA 偶联的 VHL 配体来募集 E3 连接酶来实现的。这种巧妙的构象产生了一系列Z-PROTAC,利用这些Z-PROTACs来选择性地降解Z-DNA结合蛋白ADAR1。基于Z-DNA的PROTAC(Z-PROTAC)方法引入了一种由B-型到Z-型DNA的构象变化产生的模式,它利用固有的结构特异性来增强选择性降解策略。该方法是推进基于PROTAC的治疗模式的一个鼓舞人心的途径,强调了其在PROTAC治疗领域中选择性靶向不可治疗蛋白质的潜力。


本文作者:SY

原文引用:10.1021/jacs.3c13646

责任编辑:LD

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